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Membranes et Microforces

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Site web de l’Equipe Mcube

L’équipe « M3 : Membranes et Microforces » est née en janvier 2005. Ses membres sont rassemblés autour d’un intérêt commun pour les interfaces complexes en général et les systèmes auto-assemblés de phospholipides en particulier. Ils étudient le comportement de ces systèmes d’un point de vue physique, expérimental et théorique, et possèdent une culture expérimentale commune, maîtrisant des techniques de micromanipulation et les mesures de microforces.

Une des originalités de notre activité est d’associer à une forte composante expérimentale un important effort de modélisation. Nous développons et utilisons un grand nombre de techniques expérimentales adaptées à nos systèmes, certaines de ces techniques étant uniques. Nous sondons la structure et la dynamique des interfaces depuis l’échelle du nanomètre à celle du millimètre en combinant des techniques de diffusion de rayonnement et de microscopie optique. Nous analysons enfin la réponse de ces systèmes à des forces appliquées, avec des techniques de mesures de force en situation de confinement et de micromanipulation.

L’activité du groupe est organisée suivant trois axes de recherche :

  • Bicouches lipidiques : vésicules géantes, et membranes déposées
  • Surfaces : mesures directes de forces de surface et cinétique d’adhésion
  • Systèmes hors-équilibre : morphologie, mécanique et dynamique

Les collaborations principales de l’équipe M3 incluent : LIONS (CEA Saclay, France), Université Sejong (Séoul, Corée du Sud), Université de Constance (Allemagne), Université de Sao-Paulo (Brésil), Université de Californie UC Davis (USA)

Des informations détaillées sur l’équipe, ses membres, leurs activités de recherche et leurs publications peuvent être consultées sur le site de l’équipe, à l’adresse [http://http://www.ics-cnrs.unistra.fr/Mcube/>http://http://www.ics-cnrs.unistra.fr/Mcube/]

Mots clés : appareil à force de surface (SFA), recouvrement de fluorescence (FRAP), grands instruments (diffraction de rayons X et neutrons), microscopie de fluorescence et confocale, contraste d’interférence (RICM), manipulation par micropipette, électroformation de vésicules, bicouches phospholipidiques supportées, adhésion contrôlée, interaction polymères membranes.

Membres de l’équipe :

Azar Elise more informations here
Basler Marc more informations here
Benazieb Othmène more informations here
Charitat Thierry more informations here
Marques Carlos more informations here
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Muller Pierre more informations here
Salamone Salvatore more informations here
Schmatko Tatiana more informations here
Schröder André more informations here
Stocco Antonio more informations here
Thalmann Fabrice more informations here
Wolf Jean more informations here

Lien vers site d’equipe

Anciens membres
- Salamone Salvatore
- Walter Vivien
- Kluzek Monika
- Morandi Mattia
- Hemmerle Arnaud
- Kuhl Tonya
- Marcopoulos Constantin
- Malaquin Linda
- Amoussou Balbine
- Barber Suzanne
- Sun Yuting
- Weber Georges
- Gomez Dantas Wellington

2018

Bacellar, I. O. L., Baptista, M. S., Junqueira, H. C., Wainwright, M., Thalmann, F., Marques, C. M., et al. (2018). Permeability of DOPC bilayers under photoinduced oxidation: Sensitivity to photosensitizer. Biochim Biophys Acta, .
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de Oliveira, T. E., Marques, C. M., & Netz, P. A. (2018). Molecular dynamics study of the LCST transition in aqueous poly(N-n-propylacrylamide). Phys Chem Chem Phys, 20(15), 10100–10107.
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Kluzek, M., Schmutz, M., Marques, C. M., & Thalmann, F. (2018). Kinetic evolution of DOPC lipid bilayers exposed to alpha-cyclodextrins. Soft Matter, 14(28), 5800–5810.
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Morandi, M. I., Sommer, M., Kluzek, M., Thalmann, F., Schroder, A. P., & Marques, C. M. (2018). DPPC Bilayers in Solutions of High Sucrose Content. Biophys J, 114(9), 2165–2173.
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Mukherji, D., Marques, C. M., & Kremer, K. (2018). Collapse in two good solvents, swelling in two poor solvents: defying the laws of polymer solubility? Journal Of Physics-Condensed Matter, 30(2).
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2017

Blachon, F., Harb, F., Munteanu, B., Piednoir, A., Fulcrand, R., Charitat, T., et al. (2017). Nanoroughness Strongly Impacts Lipid Mobility in Supported Membranes. Langmuir, 33(9), 2444–2453.
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Weinberger, A., Walter, V., MacEwan, S. R., Schmatko, T., Muller, P., Schroder, A. P., et al. (2017). Cargo self-assembly rescues affinity of cell-penetrating peptides to lipid membranes. Sci Rep, 7, 43963.
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2016

Guo, Y., Baulin, V. A., & Thalmann, F. (2016). Peroxidised phospholipid bilayers: insight from coarse-grained molecular dynamics simulations. Soft Matter, 12(1), 263–271.
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Hemmerle, A., Fragneto, G., Daillant, J., & Charitat, T. (2016). Reduction in Tension and Stiffening of Lipid Membranes in an Electric Field Revealed by X-Ray Scattering. Phys Rev Lett, 116(22), 228101.
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Micheletto, Y. M. S., Marques, C. M., Silveira, N. P. da, & Schroder, A. P. (2016). Electroformation of Giant Unilamellar Vesicles: Investigating Vesicle Fusion versus Bulge Merging. Langmuir, 32(32), 8123–8130.
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Micheletto, Y. M. S., Moro, C. F., Lopes, F. C., Ligabue-Braun, R., Martinelli, A. H. S., Marques, C. M., et al. (2016). Interaction of jack bean (Canavalia ensiformis) urease and a derived peptide with lipid vesicles. Colloids Surf B Biointerfaces, 145, 576–585.
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2015

Aoki, P. H. B., Schroder, A. P., Constantino, C. J. L., & Marques, C. M. (2015). Bioadhesive giant vesicles for monitoring hydroperoxidation in lipid membranes. Soft Matter, 11(30), 5995–5998.
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Bauer, M., Kekicheff, P., Iss, J., Fajolles, C., Charitat, T., Daillant, J., et al. (2015). Sliding tethered ligands add topological interactions to the toolbox of ligand-receptor design. Nature Communications, 6.
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Gromer, A., Nassar, M., Thalmann, F., Hebraud, P., & Holl, Y. (2015). Simulation of Latex Film Formation Using a Cell Model in Real Space: Vertical Drying. Langmuir, 31(40), 10983–10994.
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Hemmerle, A., Froehlicher, G., Bergeron, V., Charitat, T., & Farago, J. (2015). Worm-like instability of a vibrated sessile drop. Epl, 111(2).
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